Бюллетень Московского общества испытателей природы. Отдел биологический
Bulletin of Moscow Society of Naturalists.<br /> Biological Series
Перейти в оглавление выпуска:
2024. Т. 129. Вып. 2.
Go to the issue table of contents:
2024. Т. 129. Вып. 2.

Данные статьи

Description

DOI

10.55959/MSU0027-1403-BB-2024-129-2-54-66

Авторы:

Authors:

Комиссаров Н.С., Дьяков М.Ю., Гарибова Л.В.

Ключевые слова:

Keywords:

макромицеты, криохранение, криопротекторы, реинтродукция, транслокация

Скачать pdf статьи:

Download the article:

Ссылка для цитирования:

For citation:

Комиссаров Н.С., Дьяков М.Ю., Гарибова Л.В. , Хранение чистых культур редких видов макромицетов в связи с перспективами реинтродукции и транслокации // Бюл. МОИП. Отд. биол. 2024. Т. 129. Вып. 2. С. 54-66

Хранение чистых культур редких видов макромицетов в связи с перспективами реинтродукции и транслокации

В работе обсуждаются проблемы сохранения редких видов макромицетов в культуре. Составлена коллекция чистых культур восьми видов этой группы. Проведен сравнительный анализ методов хранения чистых культур. Исследованы как классические, так и модифицированные протоколы хранения. Особое внимание уделяется использованию различных криопротекторных соединений и субстратов-носителей при криохранении чистых культур макромицетов. Показана необходимость индивидуального подбора и оптимизации методов хранения чистых культур для различных видов макромицетов.

References

  • Белова Н.В., Псурцева Н.В., Гачкова У.Ю., Озерская С.М. Сохранение биоразнообразия базидиомицетов ex situ в специализированной коллекции культур LE (БИН) // Микология и фитопатология. 2005. Т. 39, вып. 2. С. 1–10.
  • Бухало А.С. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре. Киев, 1988. 143 с.
  • Камзолкина О.В., Богданов А.Г. Методическое пособие по микроскопии в исследованиях грибов и водорослей // 2017. М., 115 с.
  • Комиссаров Н.С., Дьяков М.Ю., Гарибова Л.В. Методы длительного хранения чистых культур макромицетов // Микология и фитопатология. 2023. Т. 57. Вып. 3. С. 155–171 (DOI: 10.31857/S0026364823030054).
  • Красная книга Российской Федерации // 2008. М., 854 с.
  • Красная книга Ленинградской области // 2018. СПб., 848 с.
  • Красная книга природы Ленинградской области // 2000. Т. 2. СПб., 672 с.
  • Минприроды РФ. Об утверждении Перечня объектов растительного мира, занесенных в Красную книгу Российской Федерации // Приказ № 320 от 23.05.2023. Регистрационный № 74362 от 21.07.2023.
  • Широких А.А., Широких И.Г. К вопросу об охране грибов // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2021. Т. 22. Вып. 5. С. 641–660 (https:// doi.org/10.30766/2072-9081.2021.22.5.641-660).
  • Abrego N., Oivanenb P., Vinerc I., Nordéne J., Penttiläg R., Dahlbergh A., Heilmann-Clauseni J., Somervuod P., Ovaskainena O., Schigel D. Reintroduction of threatened fungal species via inoculation // Biological Conservation. 2016. Vol. 203. P. 120–124 (https://doi. org/10.1016/j.biocon.2016.09.014).
  • Bertéli M.B.D., Pinheiro C.R., Philadelpho B.O., Otero D.M., Ribeiro C.D.F., de Souza C.O., Ferreira E.S., Ruiz S.P., do Valle J.S., Linde G.A., Colauto N.B. Long-term cryopreservation of Lentinus crinitus strains by wheat grain technique // Journal of Microbiological Methods. 2022. Vol. 198. https://doi.org/10.1016/j. mimet.2022.106491.
  • Bisko N.A., Lomberg M.L., Mykchaylova O.B., Mytropolska N.Y. Conservation of biotechnological important species diversity and genetic resources of rare and endangered fungi of Ukraine // Plant & Fungal Research. 2018. Vol. 1. Is. 1. P. 18–27 (DOI: 10.29228/plantfungalres.41).
  • Boddy, L., P. Wald, D. Parfi tt, and H. Rogers. Preliminary ecological investigation of the wood-inhabiting tiered tooth Creolophus (= Hericium) cirrhatus, coral tooth Hericium erinaceum, bearded tooth H. coralloides and oak polypore Piptoporus quercinus (= Buglossoporus pulvinus) // English Nature Report 2004. no. 616.
  • Cardinale B.J., Duffy J.E., Gonzalez A., Hooper D.U., Perrings C., Venail P., Narwani A., Mace G.M., Tilman D., Wardle D.A., Kinzig A.P., Daily G.C., Loreau M., Grace J.B., Larigauderie A., Srivastava D.S., Naeem S. Biodiversity loss and its impact on humanity // Nature. 2012. Vol. 486. P. 59–67.
  • Choi K.-D., Lee K.-T., Shim J.O., Lee Y.-S., Lee, T.-S., Lee S.S., Guo S.-X., Lee M.W. A New Method for Cultivation of Sclerotium of Grifola umbellata // Mycobiology. 2003. Vol. 31. Is. 2. P. 105–112.
  • Colauto N.B., da Eira A.F., Linde G.A. Cryopreservation at −80°C of Agaricus blazei on rice grains // World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2011. Vol. 27. Is. 12. P. 3015–3018 (https://doi.org/10.1007/ s11274-011-0772-9).
  • Crockatt M. Ecology of the rare oak polypore Piptoporus quercinus and the tooth fungi Hericium cirrhatum. H. coralloides, and H. erinaceus in the UK // 2008. ProQuest LLC.
  • Dahlberg A., Genney D.R., Heilmann-Clausen J. Developing a comprehensive strategy for fungal conservation in Europe: current status and future needs // Fungal Ecology. 2010. Vol. 3. P. 50–64.
  • Domashlinets V. List the excluded plant and fungal species from the Red Book of Ukraine (flora) // Order of the Ministry of Environmental Protection and natural resources of Ukraine February 15. 2021. № 111. Ukraine.
  • Homolka L., Lisá L., Eichlerová I., Nerud F. Cryopreservation of basidiomycete strains using perlite // J. Microbiological Methods. 2001. Vol. 47. Is. 3. P. 307–313 (https://doi.org/10.1016/S0167-7012(01)00338-4).
  • Homolka L., Lisa L., Kubátová A., Váňová M., Janderová B., Nerud F. Cryopreservation of filamentous micromycetes and yeasts using perlite // Folia Microbiologica. 2007. Vol. 52, Is. 2. P. 153–157 (https://doi. org/10.1007/BF02932154).
  • Honegger R. The Impact of different long-term storage conditions on the viability of lichen-forming ascomycetes and their green algal photobiont, Trebouxia spp. // Plant Biology. 2003. Vol. 5. Is. 3. P. 324–330.
  • Hwang S.W. Effects of Ultra-Low Temperatures on the Viability of Selected Fungus Strains // Mycologia. 1960. Vol. 52. Is. 3. P. 527–529 (https://doi. org/10.2307/3755974).
  • Hwang S.W. Long-Term Preservation of Fungus Cultures with Liquid Nitrogen Refrigeration // Applied Microbiology. 1966. Vol. 14, Is. 5. P. 784–788 (https://doi. org/10.1128/am.14.5.784-788.1966).
  • Hwang S.W. Investigation of Ultra-Low Temperature for Fungal Cultures. I. An Evaluation of Liquid-Nitrogen Storage for Preservation of Selected Fungal Cultures // Mycologia. 1968. Vol. 60. Is. 3. P. 613–621 (https://doi.org/10.1080/00275514.1968.12018610).
  • Kaul T.N. Conservation of mushroom biodiversity // Mushroom biology and biotechnology (Eds. Rai R.D., Singh S.K., Yadav M.C., Tewari R.P.) 2007. Mushroom Society of India, Chambaghat, Solan. P. 115–126 (https://www.researchgate.net/publication/294889868).
  • Larson D.W. Patterns of lichen photosynthesis and respiration following prolonged frozen storage // Canad. J. Bot. 1978. Vol. 17. P. 2119–2123.
  • Lee S.B., Milgroom M.G., Taylor J.W. A rapid, high yield mini-prep method for isolation of total genomic DNA from fungi // Fungal Genetics Reports. 1988. Vol. 35. Is. 11. P. 23–24.
  • Li Y., Wang Q. The development of the Fungal Resources Conservation System «One District, One Herbarium and Five Banks» and its application on Qinghai-Tibet Plateau // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2019. Т. 20, вып. 1. С. 29–35 (DOI: 10.30766/20729081.2019.20.1.29-35).
  • Pasailiuk M.V., Sukhomlyn M.M., Gryganskyi A.P., Fontana N.M. World biota conservation vs fungal conservation practice // Current Research in Environmental & Applied Mycology. 2022. Vol. 12. Is. 1. P. 268–284 (DOI 10.5943/cream/12/1/17).
  • Pasaylyuk M., Petrichuk Y., Tsvyd N., Sukhomlyn M. The aspects of reproduction of Clathrus archeri (Berk.) Dring by re-situ method in the National Nature Park Hutsulshchyna // Forest Research Papers. 2018. Vol. 79. Is. 3. P. 281–287 (DOI: 10.2478/frp2018-0028).
  • Piętka J., Grzywacz A. In situ inoculation of larch with the threatened wood-decay fungus Fomitopsis officinalis (Basidiomycota) – experimental studies // Polish Botanical Journal. 2005. Vol. 50. Is. 2. P. 225–231.
  • Psurtseva N.V., Kiyashko A.A., Gachkova E.Y., Belova N.V. Basidiomycetes Culture Collection LE (BIN): Catalogue of Strains. M., 2007. 116 p.
  • Tukey J.W. Comparing individual means in the analysis of variance // Biometrics. 1949. Vol. 5. Is. 2. P. 99–114.

Список литературы

  • Белова Н.В., Псурцева Н.В., Гачкова У.Ю., Озерская С.М. Сохранение биоразнообразия базидиомицетов ex situ в специализированной коллекции культур LE (БИН) // Микология и фитопатология. 2005. Т. 39, вып. 2. С. 1–10.
  • Бухало А.С. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре. Киев, 1988. 143 с.
  • Камзолкина О.В., Богданов А.Г. Методическое пособие по микроскопии в исследованиях грибов и водорослей // 2017. М., 115 с.
  • Комиссаров Н.С., Дьяков М.Ю., Гарибова Л.В. Методы длительного хранения чистых культур макромицетов // Микология и фитопатология. 2023. Т. 57. Вып. 3. С. 155–171 (DOI: 10.31857/S0026364823030054).
  • Красная книга Российской Федерации // 2008. М., 854 с.
  • Красная книга Ленинградской области // 2018. СПб., 848 с.
  • Красная книга природы Ленинградской области // 2000. Т. 2. СПб., 672 с.
  • Минприроды РФ. Об утверждении Перечня объектов растительного мира, занесенных в Красную книгу Российской Федерации // Приказ № 320 от 23.05.2023. Регистрационный № 74362 от 21.07.2023.
  • Широких А.А., Широких И.Г. К вопросу об охране грибов // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2021. Т. 22. Вып. 5. С. 641–660 (https:// doi.org/10.30766/2072-9081.2021.22.5.641-660).
  • Abrego N., Oivanenb P., Vinerc I., Nordéne J., Penttiläg R., Dahlbergh A., Heilmann-Clauseni J., Somervuod P., Ovaskainena O., Schigel D. Reintroduction of threatened fungal species via inoculation // Biological Conservation. 2016. Vol. 203. P. 120–124 (https://doi. org/10.1016/j.biocon.2016.09.014).
  • Bertéli M.B.D., Pinheiro C.R., Philadelpho B.O., Otero D.M., Ribeiro C.D.F., de Souza C.O., Ferreira E.S., Ruiz S.P., do Valle J.S., Linde G.A., Colauto N.B. Long-term cryopreservation of Lentinus crinitus strains by wheat grain technique // Journal of Microbiological Methods. 2022. Vol. 198. https://doi.org/10.1016/j. mimet.2022.106491.
  • Bisko N.A., Lomberg M.L., Mykchaylova O.B., Mytropolska N.Y. Conservation of biotechnological important species diversity and genetic resources of rare and endangered fungi of Ukraine // Plant & Fungal Research. 2018. Vol. 1. Is. 1. P. 18–27 (DOI: 10.29228/plantfungalres.41).
  • Boddy, L., P. Wald, D. Parfi tt, and H. Rogers. Preliminary ecological investigation of the wood-inhabiting tiered tooth Creolophus (= Hericium) cirrhatus, coral tooth Hericium erinaceum, bearded tooth H. coralloides and oak polypore Piptoporus quercinus (= Buglossoporus pulvinus) // English Nature Report 2004. no. 616.
  • Cardinale B.J., Duffy J.E., Gonzalez A., Hooper D.U., Perrings C., Venail P., Narwani A., Mace G.M., Tilman D., Wardle D.A., Kinzig A.P., Daily G.C., Loreau M., Grace J.B., Larigauderie A., Srivastava D.S., Naeem S. Biodiversity loss and its impact on humanity // Nature. 2012. Vol. 486. P. 59–67.
  • Choi K.-D., Lee K.-T., Shim J.O., Lee Y.-S., Lee, T.-S., Lee S.S., Guo S.-X., Lee M.W. A New Method for Cultivation of Sclerotium of Grifola umbellata // Mycobiology. 2003. Vol. 31. Is. 2. P. 105–112.
  • Colauto N.B., da Eira A.F., Linde G.A. Cryopreservation at −80°C of Agaricus blazei on rice grains // World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2011. Vol. 27. Is. 12. P. 3015–3018 (https://doi.org/10.1007/ s11274-011-0772-9).
  • Crockatt M. Ecology of the rare oak polypore Piptoporus quercinus and the tooth fungi Hericium cirrhatum. H. coralloides, and H. erinaceus in the UK // 2008. ProQuest LLC.
  • Dahlberg A., Genney D.R., Heilmann-Clausen J. Developing a comprehensive strategy for fungal conservation in Europe: current status and future needs // Fungal Ecology. 2010. Vol. 3. P. 50–64.
  • Domashlinets V. List the excluded plant and fungal species from the Red Book of Ukraine (flora) // Order of the Ministry of Environmental Protection and natural resources of Ukraine February 15. 2021. № 111. Ukraine.
  • Homolka L., Lisá L., Eichlerová I., Nerud F. Cryopreservation of basidiomycete strains using perlite // J. Microbiological Methods. 2001. Vol. 47. Is. 3. P. 307–313 (https://doi.org/10.1016/S0167-7012(01)00338-4).
  • Homolka L., Lisa L., Kubátová A., Váňová M., Janderová B., Nerud F. Cryopreservation of filamentous micromycetes and yeasts using perlite // Folia Microbiologica. 2007. Vol. 52, Is. 2. P. 153–157 (https://doi. org/10.1007/BF02932154).
  • Honegger R. The Impact of different long-term storage conditions on the viability of lichen-forming ascomycetes and their green algal photobiont, Trebouxia spp. // Plant Biology. 2003. Vol. 5. Is. 3. P. 324–330.
  • Hwang S.W. Effects of Ultra-Low Temperatures on the Viability of Selected Fungus Strains // Mycologia. 1960. Vol. 52. Is. 3. P. 527–529 (https://doi. org/10.2307/3755974).
  • Hwang S.W. Long-Term Preservation of Fungus Cultures with Liquid Nitrogen Refrigeration // Applied Microbiology. 1966. Vol. 14, Is. 5. P. 784–788 (https://doi. org/10.1128/am.14.5.784-788.1966).
  • Hwang S.W. Investigation of Ultra-Low Temperature for Fungal Cultures. I. An Evaluation of Liquid-Nitrogen Storage for Preservation of Selected Fungal Cultures // Mycologia. 1968. Vol. 60. Is. 3. P. 613–621 (https://doi.org/10.1080/00275514.1968.12018610).
  • Kaul T.N. Conservation of mushroom biodiversity // Mushroom biology and biotechnology (Eds. Rai R.D., Singh S.K., Yadav M.C., Tewari R.P.) 2007. Mushroom Society of India, Chambaghat, Solan. P. 115–126 (https://www.researchgate.net/publication/294889868).
  • Larson D.W. Patterns of lichen photosynthesis and respiration following prolonged frozen storage // Canad. J. Bot. 1978. Vol. 17. P. 2119–2123.
  • Lee S.B., Milgroom M.G., Taylor J.W. A rapid, high yield mini-prep method for isolation of total genomic DNA from fungi // Fungal Genetics Reports. 1988. Vol. 35. Is. 11. P. 23–24.
  • Li Y., Wang Q. The development of the Fungal Resources Conservation System «One District, One Herbarium and Five Banks» and its application on Qinghai-Tibet Plateau // Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2019. Т. 20, вып. 1. С. 29–35 (DOI: 10.30766/20729081.2019.20.1.29-35).
  • Pasailiuk M.V., Sukhomlyn M.M., Gryganskyi A.P., Fontana N.M. World biota conservation vs fungal conservation practice // Current Research in Environmental & Applied Mycology. 2022. Vol. 12. Is. 1. P. 268–284 (DOI 10.5943/cream/12/1/17).
  • Pasaylyuk M., Petrichuk Y., Tsvyd N., Sukhomlyn M. The aspects of reproduction of Clathrus archeri (Berk.) Dring by re-situ method in the National Nature Park Hutsulshchyna // Forest Research Papers. 2018. Vol. 79. Is. 3. P. 281–287 (DOI: 10.2478/frp2018-0028).
  • Piętka J., Grzywacz A. In situ inoculation of larch with the threatened wood-decay fungus Fomitopsis officinalis (Basidiomycota) – experimental studies // Polish Botanical Journal. 2005. Vol. 50. Is. 2. P. 225–231.
  • Psurtseva N.V., Kiyashko A.A., Gachkova E.Y., Belova N.V. Basidiomycetes Culture Collection LE (BIN): Catalogue of Strains. M., 2007. 116 p.
  • Tukey J.W. Comparing individual means in the analysis of variance // Biometrics. 1949. Vol. 5. Is. 2. P. 99–114.

Бюллетень МОИП (отд. биол.) не входит в Web of Science Core Collection, но индексируется в пяти продуктах компании Thomson Reuters на платформе Web of Science —  Russian Science Citation Index, BIOSIS Previews, BIOSIS Citation Index, Biological Abstracts, Zoological Record.

 

Бюллетень МОИП (отд. биол.) входит в число журналов из списка RSCI, в связи с чем, согласно Рекомендациям ВАК от 26.10.2022 г. (пункт 5), приравнен к журналам Перечня ВАК из К1.

Bulletin of the MOIP (ed. biol.) It is not included in the Web of Science Core Collection, but is indexed in five Thomson Reuters products on the Web of Science platform — Russian Science Citation Index, BIOSIS Previews, BIOSIS Citation Index, Biological Abstracts, Zoological Record.

The Bulletin of the MOIP (otd. biol.) is one of the journals from the RSCI list, and therefore, according to the Recommendations of the Higher Attestation Commission of 10/26/2022 (item 5), it is equated to the journals of the Higher Attestation Commission List from K1.