Перейти в оглавление выпуска:
2019. Т. 124. Вып. 5.
Go to the issue table of contents:
2019. Т. 124. Вып. 5.

Данные статьи

Description

DOI

Нет

Авторы:

Authors:

Чурикова О.А., Криницына А.А.

Ключевые слова:

Keywords:

Syringa vulgaris L., культура in vitro, морфогенез, тидиазурон, микроклональное размножение.

Скачать pdf статьи:

Download the article:

Ссылка для цитирования:

For citation:

Чурикова О.А., Криницына А.А., Изучение влияния состава питательной среды и тидиазурона на реализацию морфогенетического потенциала различных сортов сирени в культуре in vitro // Бюл. МОИП. Отд. биол. 2019. Т. 124. Вып. 5. С. 55-64

Изучение влияния состава питательной среды и тидиазурона на реализацию морфогенетического потенциала различных сортов сирени в культуре in vitro

Четыре сорта сирени российской и зарубежной селекции («Великая Победа», «П.П. Кончаловский», «Сенсация» и «Виолетта») размножены в стерильных условиях с использованием среды с нормальным и увеличенным в 1,5 раза содержанием макросолей, а также с добавлением в качестве растительных гормонов N6-(Δ2-изопентил) аденина и тидиазурона в концентрации 1,5 и 0,1 мг/л соответственно. Показано, что восприимчивость к разным типам цитокининов сортоспецифична. Использование тидиазурона при размножении сирени сорта «Сенсация» приводит к снижению коэффициента размножения, у трех других сортов – к его повышению. Сроки нахождения в стерильной культуре и число пассажей практически не влияют на регенерационные способности сирени сорта «Виолетта».

References

  • Балмышева Н., Полякова Т. Время сирени. М., 2007. 232 с. [Balmysheva N., Polyakova T. Vremya sireni. M., 2007. 232 s.].
  • Криницына А.А., Мурашев В.В., Раппопорт А.В., Сперанская А.С., Успенская М.С., Чурикова О.А. Микроклональное размножение декоративных культур: Пион древовидный (Paeonia suffruticosa). M., 2008. 40 с. [Krinitsyna A.A., Murashev V.V., Rappoport A.V., Speranskaya A.S., Uspenskaya M.S., Churikova O.A. Mikroklonal’noe razmnozhenie dekorativnykh kul’tur: Pion drevovidnyi (Paeonia suffruticosa). M., 2008. 40 s.].
  • Машкина О.С., Табацкая Т.М., Морковина С.С., Панявина Е.А. Выращивание посадочного материала тополя белого (Populus alba L.) на основе коллекции in vitro и оценка его себестоимости // Лесотехнический журнал. 2016. Т. 6. № 1. С. 28–44 [Mashkina O.S., Tabatskaya T.M., Morkovina S.S., Panyavina E.A. Vyrashchivanie posadochnogo materiala topolya belogo (Populus alba L.) na osnove kollektsii in vitro i otsenka ego sebestoimosti // Lesotekhnicheskii zhurnal. 2016. T. 6. № 1. S. 28–44].
  • Молканова О.И., Чурикова О.А., Коновалова Л.Н., Окунева И.Б. Клональное микроразмножение интродуцированных сортов Syringa vulgaris L. // Вестн. Моск. ун-та. (Сер. биол.). 2002. Т. 4. C. 8–14 [Molkanova O.I., Churikova O.A., Konovalova L.N., Okuneva I.B. Klonal’noe mikrorazmnozhenie introdutsirovannykh sortov Syringa vulgaris L. // Vestn. Mosk. un-ta. (Ser. Biol.). 2002. T. 4. C. 8–14.
  • Набиева А.Ю. Биотехнологические приемы клонального микроразмножения перспективных сортов Syringa vulgaris L. для Западной Сибири // Вестн. ИрГСХА. 2011. Т. 5. № 44. С. 69–76 [Nabieva A.Yu. Biotekhnologicheskie priemy klonal’nogo mikrorazmnozheniya perspektivnykh sortov Syringa vulgaris L. dlya Zapadnoi Sibiri // Vestn. IrGSKhA. 2011. T. 5. № 44. S. 69–76].
  • Спиридович Е.В. Ботанические коллекции: документирование и биотехнологические аспекты использования. Минск., 2015. 226 с. [Spiridovich E.V. Botanicheskie kollektsii: dokumentirovanie i biotekhnologicheskie aspekty ispol’zovaniya. Minsk, 2015. 226 s.].
  • Чурикова О.А., Мурашев В.В. Микроклональное размножение декоративных культур: Сирень обыкновенная (Syringa vulgaris L.). М., 2010. 32 с. [Churikova O.A., Murashev V.V. Mikroklonal’noe razmnozhenie dekorativnykh kul’tur: Siren’ obyknovennaya (Syringa vulgaris L.). M., 2010. 32 s.].
  • Arndt F.R., Rusch R., Stillfried H.V., Hanisch B., Martin W.C. A new cotton defoliant // Plant Physiol. 1976. Vol. 57.  P. 99.
  • Basu S., Jha T.B. Direct organogenesis, phytochemical screening and assessment of genetic stability in clonally raised Chlorophytum borivilianum // Environmental and Experimental Biology. 2014. Vol. 12. P. 167–178.
  • Bates S., Preece J.E., Navarrete N.E., Vansambeek J.W., Gaffney G.R. Thidiazuron stimulates shoot organogenesis and somatic embryogenesis in white ash (Fraxinus аmericana L.) // Plant Cell Tissue Organ Cult. 1992. Vol. 31. N 1. P. 21–29.
  • Borkowska B., Litwinczuk W. Activity of thidiazuron in in vitro shoot cultures of Prunus sp. and Morus alba // Biologia plantarum. 1993. Vol. 35. N 1. P. 63–67.
  • Bukhari N.A.W., Siddique I., Perveen K. Preculturing effect of thidiazuron on in vitro shoot multiplication and micropropagation round in Capparis decidua (Forsk.) an important multipurpose plant // Acta Biologica Hungarica. 2016. Vol. 67. N 3. P. 297–304.
  • Churikova O.A. Microclonal propagation and some regularities of morphogenesis of daylily and hosta in vitro // Moscow Univ. Biol. Sci. Bull. 2008. Vol. 63, N 2. P. 89–94.
  • Einset J.W., Alexander J.H. Multiplication of Syringa species and cultivars in tissue culture // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators Soc. 1985. Vol. 34. P. 628–636.
  • Faisal M., Anis M. Thidiazuron induced high frequency axillary shoot multiplication in Psoralea corylifolia // Biologia Plantarum. 2006. Vol. 50. N 3. P. 437–440.
  • Favre J.M., Juncker B. In vitro growth of buds taken from seedlings and adult plant material in Quercus robur L. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1987. Vol. 8. P. 49–60.
  • Gabryszewska E. Effect of various levels of sucrose, nitrogen salts and temperature on the growth and development of Syringa vulgaris L. shoots in vitro // Journal of Fruit and Ornamental Plant Research. 2011. Vol. 19. N 2. P. 113–148.
  • Guo B., Abbasi B.H., Zeb A., Xu L.L., Wei Y.H. Thidiazuron: A multi-dimensional plant growth regulator // African Journal of Biotechnology. 2011. Vol. 10. N 45. P. 8984–9000.
  • Hand C., Maki S., Reed B.M. Modeling optimal mineral nutrition for hazelnut micropropagation // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2014. Vol. 119. P. 411–425.
  • Huetteman C.A., Preece J.E. Thidiazuron: a potent cytokinin for woody plant tissue culture // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1993. Vol. 33. P. 105–119.
  • Jabbarzadeh Z., Khosh-Khui M. Factors affecting tissue culture of Damask rose (Rosa damascena Mill.) // Scientia Horticulturae. 2005. Vol. 105. P. 475–482.
  • Jimenez V., Castillo J., Tavare E., Guevara E., Montie M. In vitro propagation of the neotropical giant bamboo, Guadua angustifolia Kunth, through axillary shoot proliferation // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2006. Vol. 86. P. 389–395.
  • Kamenski P.A., Sazonov A.E., Fedyanin A.A., Sadovnichy V.A. Biological collections: Chasing the ideal // Acta Naturae. 2016. Vol. 8. P. 6–9.
  • Mashkina O.S., Tabatskaya T.M., Starodubtseva L.M. Mass clonal propagation of karelian birch and poplar through long-term shoot multiplication // Russian Journal of Plant Physiology. 1999. Vol. 46, N 6. P. 835–837.
  • Molkanova O.I., Spirydovich E.V., Konovalova L.N., Brel N.G., Zinina U.M., Reshetnikov V.N. Complex observation of introduction species and varieties of Syringa L. in Main Botanical Garden of the RAS and in the Central Botanical Garden of the NAS of Belarus // Bulletin of Udmurt University. Biology and Earth Sciences. 2011. Vol. 2. P. 66–73.
  • Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. Vol. 15. P. 473–497.
  • Nesterowicz S., Kulpa D., Moder K., Kurek J. Micropropagation of an old specimen of common lilac (Syringa vulgaris L.) from the dendrological garden at Przelewice // Hortorum Cultus. 2006. Vol. 5. N 1. P. 27–35.
  • Norton M.E., Norton C.R. Change in shoot proliferation with repeated in vitro subculture of shoots of woody species of Rosaceae // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1986. Vol. 5. P. 187–197.
  • Pierik R.L.M., Steegmans H.H.M., Elias A.A., Stiekema O.T.J., van der Velde A.J. Vegetative propagation of Syringa vulgaris L. in vitro // Acta Horticulturae. 1988. Vol. 226. P. 195–204.
  • Ramanayake S.M.S.D., Yakandawala K. Micropropagation of the giant bamboo (Dendrocalamus giganteus Munro) from nodal explants of field grown culms // Plant Sci. 1997. Vol. 129. P. 213–223.
  • Sharma K.K., Thorpe T.A. In vitro propagation of mulberry (Morus alba L.) through nodal segments // Scientia Horticulturae. 1990. Vol. 42. N 4. P. 307–320.
  • Tomsone S., Galeniece Ā., Akere A., Priede G., Zīra L. In vitro propagation of Syringa vulgaris L. cultivars // Biologija. 2007. Vol. 53. Vol. 2. P. 28–31.
  • Van Nieuwkerk J.P., Zimmerman R.H., Fordham I. Thidiazuron stimulation of apple shoot proliferation in vitro // Hort. Sci. 1986. Vol. 21. P. 516–518.

Список литературы

  • Балмышева Н., Полякова Т. Время сирени. М., 2007. 232 с. [Balmysheva N., Polyakova T. Vremya sireni. M., 2007. 232 s.].
  • Криницына А.А., Мурашев В.В., Раппопорт А.В., Сперанская А.С., Успенская М.С., Чурикова О.А. Микроклональное размножение декоративных культур: Пион древовидный (Paeonia suffruticosa). M., 2008. 40 с. [Krinitsyna A.A., Murashev V.V., Rappoport A.V., Speranskaya A.S., Uspenskaya M.S., Churikova O.A. Mikroklonal’noe razmnozhenie dekorativnykh kul’tur: Pion drevovidnyi (Paeonia suffruticosa). M., 2008. 40 s.].
  • Машкина О.С., Табацкая Т.М., Морковина С.С., Панявина Е.А. Выращивание посадочного материала тополя белого (Populus alba L.) на основе коллекции in vitro и оценка его себестоимости // Лесотехнический журнал. 2016. Т. 6. № 1. С. 28–44 [Mashkina O.S., Tabatskaya T.M., Morkovina S.S., Panyavina E.A. Vyrashchivanie posadochnogo materiala topolya belogo (Populus alba L.) na osnove kollektsii in vitro i otsenka ego sebestoimosti // Lesotekhnicheskii zhurnal. 2016. T. 6. № 1. S. 28–44].
  • Молканова О.И., Чурикова О.А., Коновалова Л.Н., Окунева И.Б. Клональное микроразмножение интродуцированных сортов Syringa vulgaris L. // Вестн. Моск. ун-та. (Сер. биол.). 2002. Т. 4. C. 8–14 [Molkanova O.I., Churikova O.A., Konovalova L.N., Okuneva I.B. Klonal’noe mikrorazmnozhenie introdutsirovannykh sortov Syringa vulgaris L. // Vestn. Mosk. un-ta. (Ser. Biol.). 2002. T. 4. C. 8–14.
  • Набиева А.Ю. Биотехнологические приемы клонального микроразмножения перспективных сортов Syringa vulgaris L. для Западной Сибири // Вестн. ИрГСХА. 2011. Т. 5. № 44. С. 69–76 [Nabieva A.Yu. Biotekhnologicheskie priemy klonal’nogo mikrorazmnozheniya perspektivnykh sortov Syringa vulgaris L. dlya Zapadnoi Sibiri // Vestn. IrGSKhA. 2011. T. 5. № 44. S. 69–76].
  • Спиридович Е.В. Ботанические коллекции: документирование и биотехнологические аспекты использования. Минск., 2015. 226 с. [Spiridovich E.V. Botanicheskie kollektsii: dokumentirovanie i biotekhnologicheskie aspekty ispol’zovaniya. Minsk, 2015. 226 s.].
  • Чурикова О.А., Мурашев В.В. Микроклональное размножение декоративных культур: Сирень обыкновенная (Syringa vulgaris L.). М., 2010. 32 с. [Churikova O.A., Murashev V.V. Mikroklonal’noe razmnozhenie dekorativnykh kul’tur: Siren’ obyknovennaya (Syringa vulgaris L.). M., 2010. 32 s.].
  • Arndt F.R., Rusch R., Stillfried H.V., Hanisch B., Martin W.C. A new cotton defoliant // Plant Physiol. 1976. Vol. 57.  P. 99.
  • Basu S., Jha T.B. Direct organogenesis, phytochemical screening and assessment of genetic stability in clonally raised Chlorophytum borivilianum // Environmental and Experimental Biology. 2014. Vol. 12. P. 167–178.
  • Bates S., Preece J.E., Navarrete N.E., Vansambeek J.W., Gaffney G.R. Thidiazuron stimulates shoot organogenesis and somatic embryogenesis in white ash (Fraxinus аmericana L.) // Plant Cell Tissue Organ Cult. 1992. Vol. 31. N 1. P. 21–29.
  • Borkowska B., Litwinczuk W. Activity of thidiazuron in in vitro shoot cultures of Prunus sp. and Morus alba // Biologia plantarum. 1993. Vol. 35. N 1. P. 63–67.
  • Bukhari N.A.W., Siddique I., Perveen K. Preculturing effect of thidiazuron on in vitro shoot multiplication and micropropagation round in Capparis decidua (Forsk.) an important multipurpose plant // Acta Biologica Hungarica. 2016. Vol. 67. N 3. P. 297–304.
  • Churikova O.A. Microclonal propagation and some regularities of morphogenesis of daylily and hosta in vitro // Moscow Univ. Biol. Sci. Bull. 2008. Vol. 63, N 2. P. 89–94.
  • Einset J.W., Alexander J.H. Multiplication of Syringa species and cultivars in tissue culture // Comb. Proc. Intern. Plant Propagators Soc. 1985. Vol. 34. P. 628–636.
  • Faisal M., Anis M. Thidiazuron induced high frequency axillary shoot multiplication in Psoralea corylifolia // Biologia Plantarum. 2006. Vol. 50. N 3. P. 437–440.
  • Favre J.M., Juncker B. In vitro growth of buds taken from seedlings and adult plant material in Quercus robur L. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1987. Vol. 8. P. 49–60.
  • Gabryszewska E. Effect of various levels of sucrose, nitrogen salts and temperature on the growth and development of Syringa vulgaris L. shoots in vitro // Journal of Fruit and Ornamental Plant Research. 2011. Vol. 19. N 2. P. 113–148.
  • Guo B., Abbasi B.H., Zeb A., Xu L.L., Wei Y.H. Thidiazuron: A multi-dimensional plant growth regulator // African Journal of Biotechnology. 2011. Vol. 10. N 45. P. 8984–9000.
  • Hand C., Maki S., Reed B.M. Modeling optimal mineral nutrition for hazelnut micropropagation // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2014. Vol. 119. P. 411–425.
  • Huetteman C.A., Preece J.E. Thidiazuron: a potent cytokinin for woody plant tissue culture // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1993. Vol. 33. P. 105–119.
  • Jabbarzadeh Z., Khosh-Khui M. Factors affecting tissue culture of Damask rose (Rosa damascena Mill.) // Scientia Horticulturae. 2005. Vol. 105. P. 475–482.
  • Jimenez V., Castillo J., Tavare E., Guevara E., Montie M. In vitro propagation of the neotropical giant bamboo, Guadua angustifolia Kunth, through axillary shoot proliferation // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2006. Vol. 86. P. 389–395.
  • Kamenski P.A., Sazonov A.E., Fedyanin A.A., Sadovnichy V.A. Biological collections: Chasing the ideal // Acta Naturae. 2016. Vol. 8. P. 6–9.
  • Mashkina O.S., Tabatskaya T.M., Starodubtseva L.M. Mass clonal propagation of karelian birch and poplar through long-term shoot multiplication // Russian Journal of Plant Physiology. 1999. Vol. 46, N 6. P. 835–837.
  • Molkanova O.I., Spirydovich E.V., Konovalova L.N., Brel N.G., Zinina U.M., Reshetnikov V.N. Complex observation of introduction species and varieties of Syringa L. in Main Botanical Garden of the RAS and in the Central Botanical Garden of the NAS of Belarus // Bulletin of Udmurt University. Biology and Earth Sciences. 2011. Vol. 2. P. 66–73.
  • Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. Vol. 15. P. 473–497.
  • Nesterowicz S., Kulpa D., Moder K., Kurek J. Micropropagation of an old specimen of common lilac (Syringa vulgaris L.) from the dendrological garden at Przelewice // Hortorum Cultus. 2006. Vol. 5. N 1. P. 27–35.
  • Norton M.E., Norton C.R. Change in shoot proliferation with repeated in vitro subculture of shoots of woody species of Rosaceae // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1986. Vol. 5. P. 187–197.
  • Pierik R.L.M., Steegmans H.H.M., Elias A.A., Stiekema O.T.J., van der Velde A.J. Vegetative propagation of Syringa vulgaris L. in vitro // Acta Horticulturae. 1988. Vol. 226. P. 195–204.
  • Ramanayake S.M.S.D., Yakandawala K. Micropropagation of the giant bamboo (Dendrocalamus giganteus Munro) from nodal explants of field grown culms // Plant Sci. 1997. Vol. 129. P. 213–223.
  • Sharma K.K., Thorpe T.A. In vitro propagation of mulberry (Morus alba L.) through nodal segments // Scientia Horticulturae. 1990. Vol. 42. N 4. P. 307–320.
  • Tomsone S., Galeniece Ā., Akere A., Priede G., Zīra L. In vitro propagation of Syringa vulgaris L. cultivars // Biologija. 2007. Vol. 53. Vol. 2. P. 28–31.
  • Van Nieuwkerk J.P., Zimmerman R.H., Fordham I. Thidiazuron stimulation of apple shoot proliferation in vitro // Hort. Sci. 1986. Vol. 21. P. 516–518.